Uso de dietas microencapsuladas para la alimentación de larvas de la cabrilla arenera Paralabrax maculatofasciatus.

Abstract

De los alimentos inertes que han sido propuestos para sustituir el suministro de presas vivas en los cultivos larvarios de peces marinos, los alimentos microencapsulados son los que mantienen mayor estabilidad y cohesión de sus ingredientes en el agua. Además, las microcápsulas pueden utilizar los ingredientes de su formulación para formar su membrana y facilitar su digestión. El presente trabajo pretende determinar los efectos de la alimentación con microcápsulas en el crecimiento y la supervivencia de larvas de cabrilla arenera. Los eleuteroembriones de cabrilla arenera fueron distribuidos en un sistema de circulación cerrada. Los primeros 12 días de cultivo se mantuvo una baja circulación de agua, por lo que se adicionó la microalga Nannochloropsis oculata (300,000 cel/ml). Las larvas fueron alimentadas con el rotífero Brachionus plicatilis (1-10 ind/ml) de los 2 a los 15 días después de la eclosión (dde). Como tratamiento testigo, se alimentó con nauplios de Artemia (2-6 ind/ml) a partir de los 15 dde. A esta edad, en otros dos tratamientos se realizó una sustitución de alimento vivo por 2 tipos de microcápsulas, suministradas en coalimentación con alimento vivo por cinco días. La formulación del primer tipo de microcápsulas (MCC) incluyó 49% de caseína y 31% de harina de calamar como fuentes proteícas, mientras que en la formulación del segundo tipo de microcápsulas (MCH) se sustituyó 50% del contenido de harina de calamar por hidrolizado de proteína de pescado. Cada cinco días se muestrearon diez individuos por tanque para la evaluación del crecimiento. La supervivencia fue determinada al final del experimento. El desarrollo del tracto digestivo fue determinado por la actividad de enzimas intestinales encargadas de la digestión intracelular (leucina alanina peptidasa) y de la digestión extracelular (fosfatasa alcalina y aminopeptidasa N), asi como la cuantificación de mRNA codificante de amilasa mediante sondas Taqman®. Los tratamientos fueron probados por triplicado y los datos obtenidos fueron sometidos a una prueba de normalidad y una de homogeneidad de varianza para realizar un ANOVA o un análisis de comparación por rangos de Kruskall Wallis. Los tratamientos con diferencias significativas fueron detectados por pruebas a posteriori de Tukey o Siegel y Castellan. El crecimiento en talla de las larvas alimentadas con presas vivas y MCC fue significativamente mayor (p<0.05) durante los 15 dde a comparación de la talla de las larvas alimentadas con MCH. Durante los 20 dde la mayor talla se encontró en las lavas alimentadas con presas vivas. Para los 25 dde, no hubo diferencias significativas (p>0.05) entre las tallas del tratamiento testigo y las MCH, los cuales resultaron ser mayores que las larvas alimentadas con MCC. En el crecimiento en peso solo se encontraron diferencias significativas (p<0.05) en los 5 dde. La supervivencia obtenida de las larvas bajo el tratamiento testigo fue significativamente mayor (p<0.05) que en el resto de los tratamientos y no fue encontrada una diferencia significativa entre los tratamientos con microcápsulas. La actividad enzimática intestinal de las larvas bajo el tratamiento testigo fue mayor que la actividad de las larvas alimentadas con microcápsulas. Solo en las larvas alimentadas con las MCC aumentó el nivel de expresión de amilasa de los 20 a los 25 dde. Los niveles de expresión fueron mayores en las larvas alimentadas con microcápsulas a los 25 dde. Los resultados mostraron que es necesario determinar la maduración del tracto digestivo para iniciar la sustitución de presas vivas por microcápsulas.