Inducción a la triploidía en el camarón blanco Litopenaeus vannamei (Boone, 1931)

Abstract

En este trabajo se desarrolló una técnica de inducción a la triploidía en el camarón blanco Litopenaeus vannamei, afinando el manejo de los ovocitos y aplicando el tratamiento con base a la salida de los cuerpos polares, en lugar de usar tiempos fijos de aplicación y de duración. Los ovocitos se obtuvieron a partir de desoves individuales producidos en la empresa Acuacultores de La Paz (APSA). Se emplearon dos métodos de recolecta: 1) Se utilizó un recipiente de plástico de 24 L, con una ventana lateral recubiertas con malla de 100 um introducida en un recipiente con agua de mar. Posteriormente se recolectaron los ovocitos mediante sifoneo, 2) Se bajó el nivel de agua del tanque de desove aproximadamente el 90%, los ovocitos se recolectaron directamente del agua residual con un recipiente de plástico de 1 L. Se obtuvo un mayor número de ovocitos con el segundo método, y además fue más práctico. Se estudió la cinética de la salida de los cuerpos polares en los desoves de 30 hembras. De cada hembra, se observaron aproximadamente 40 ovocitos al microscopio óptico registrando el número de ovocitos y el tiempo que presentaban el primer cuerpo polar (CP1) y el segundo cuerpo polar (CP2) fuera de la membrana de fertilización (MF). Se observó una gran variabilidad entre los desoves de las hembras en la liberación del CP1 (10 a 19 min) y para el CP2 (18 a 37 min). La inducción a la triploidía se realizó mediante shock en frío de 5, 7 y 10°C. La aplicación del tratamiento se realizó al 50 (CP1-50) y 100 % (CP2-100) de los ovocitos con el CP1 fuera de la MF, y se detuvo (duración), cuando el 25 (CP2-25), 50 (CP2-50) y 100% (CP2-100) de los ovocitos tenían el CP2 liberado. Los ovocitos se incubaron hasta la eclosión. Se cosecharon los nauplios y se preservaron a -4°C para su posterior análisis por citometría de flujo. Obtuvimos triploides cuando el tratamiento se aplicó al CP1-50. No se obtuvieron triploides cuando se aplicó el tratamiento al CP1-100. Se detectaron diferencias significativas (p < 0.05), entre los porcentajes de triploidía en la temperatura (5°C =7°C; 5°C> 10°C; 7°C =10 °C). No hubo diferencias significativas (p > 0.05) para la duración ni para la interacción de la temperatura por duración en el porcentaje de triploidía. La sobrevivencia obtenida con la temperatura de 5°C y 7°C fue significativamente más baja (p < 0.05) que la obtenida a 10°C. La sobrevivencia no presentó diferencias significativas para la duración ni para la interacción de la temperatura por duración. Para concluir este trabajo estamos proponiendo inducir la triploidía en el camarón blanco aplicando un shock frío de 5 ó 7 °C. El shock debe aplicarse cuando el 50% de los ovocitos hayan expulsado el CP1 y pararse cuando el 50% presente el CP2 liberado.